Przejdź do zawartości

Inhibitory oksydazy ksantynowej

Z Wikipedii, wolnej encyklopedii

Inhibitor oksydazy ksantynowej to każda substancja, która hamuje aktywność enzymatyczną oksydazy ksantynowej, enzymu zaangażowanego w metabolizm puryn. U ludzi zahamowanie aktywności oksydazy ksantynowej wywołuje zmniejszenie wytwarzania kwasu moczowego, w związku z tym kilka leków będących inhibitorami oksydazy ksantynowej jest stosowanym w leczeniu hiperurykemii i powiązanych z nią chorób, w tym dny moczanowej[1]. Inhibitory oksydazy ksantynowej są badane pod kątem stosowania w zespole poreperfuzyjnym.

Podział

[edytuj | edytuj kod]

Inhibitory oksydazy ksantynowej dzielą się na dwa rodzaje:

a) analogi puryn:

b) inne

Roślinne inhibitory oksydazy ksantynowej

[edytuj | edytuj kod]

Doświadczalnie wykazano, że liczne produkty naturalne mogą hamować oksydazę ksantynową in vitro lub w organizmów modelowych (myszy, szczury). Istnieją trzy flawonoidy, które występują w wielu różnych owocach i warzywach: kemferol, mirycetyna i kwercetyna[4]. Bardziej ogólnie, oksydazę ksantynową hamują flawony i flawonole o płaskiej strukturze z grupą hydroksylową w pozycji 7[5]. Olejek eteryczny wyekstrahowany z Cinnamomum osmophloeum hamuje oksydazę ksantynową u myszy[6]. Naturalny surowiec propolis z wyselekcjonowanych źródeł hamuje oksydazę ksantynową u szczurów; konkretna substancja odpowiedzialna na hamowanie aktywności enzymu nie została zidentyfikowana, ponadto nieznana jest częstość występowania tego zjawiska[7]. Ekstrakt z liści rośliny Pistacia integerrima hamuje oksydazę ksantynową na poziomie, który potwierdza zasadność dalszych badań[8].

W medycynie ludowej drzewo paproci Cyathea spinulosa (dawniej Alsophila spinulosa) było stosowane w dnie moczanowej, jednakże należy podkreślić, że jej najaktywniejszy związek, kwas kawowy, jest jedynie słabym inhibitorem oksydazy ksantynowej[9].

Przypisy

[edytuj | edytuj kod]
  1. P. Pacher, A. Nivorozhkin, C. Szabó, Therapeutic Effects of Xanthine Oxidase Inhibitors: Renaissance Half a Century after the Discovery of Allopurinol, „Pharmacological Reviews”, 58 (1), 2006, s. 87–114, DOI10.1124/pr.58.1.6, PMID16507884, PMCIDPMC2233605.
  2. T. Iwanaga i inni, Involvement of uric acid transporter in increased renal clearance of the xanthine oxidase inhibitor oxypurinol induced by a uricosuric agent, benzbromarone, „Drug metabolism and disposition: the biological fate of chemicals”, 33 (12), 2005, s. 1791–5, DOI10.1124/dmd.105.006056, PMID16135657.
  3. Becker MA, Schumacher HR, Wortmann RL, Febuxostat, a novel nonpurine selective inhibitor of xanthine oxidase: a twenty-eight-day, multicenter, phase II, randomized, double-blind, placebo-controlled, dose-response clinical trial examining safety and efficacy in patients with gout, „Arthritis and rheumatism”, 52 (3), 2005, s. 916–23, DOI10.1002/art.20935, PMID15751090.
  4. L. Selloum i inni, Effects of flavonols on the generation of superoxide anion radicals by xanthine oxidase and stimulated neutrophils, „Archives of Biochemistry and Biophysics”, 395 (1), 2001, s. 49–56, DOI10.1006/abbi.2001.2562, PMID11673865.
  5. A. Nagao, M. Seki, H. Kobayashi, Inhibition of xanthine oxidase by flavonoids, „Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry”, 63 (10), 1999, s. 1787–90, DOI10.1271/bbb.63.1787, PMID10671036.
  6. S.Y. Wang i inni, Essential oil from leaves of Cinnamomum osmophloeum acts as a xanthine oxidase inhibitor and reduces the serum uric acid levels in oxonate-induced mice, „Phytomedicine”, 15 (11), 2008, s. 940, DOI10.1016/j.phymed.2008.06.002, PMID18693097.
  7. K Yoshizumi, N. Nishioka, T. Tsuji, [Xanthine oxidase inhibitory activity and hypouricemia effect of propolis in rats], „Yakugaku Zasshi”, 125 (3), 2005, s. 315–21, DOI10.1248/yakushi.125.315, PMID15738631.
  8. N.S. Ahmad i inni, Pharmacological basis for use of ''Pistacia integerrima'' leaves in hyperuricemia and gout, „Journal of Ethnopharmacology”, 117 (3), 2008, s. 478–82, DOI10.1016/j.jep.2008.02.031, PMID18420362.
  9. H.C. Chiang, Y.J. Lo, F.J. Lu, Xanthine oxidase inhibitors from the leaves of Alsophila spinulosa (Hook) Tryon, „Journal of Enzyme Inhibition”, 8 (1), 1994, s. 61–71, DOI10.3109/14756369409040777, PMID7539070.